Ciplox gotas para los oídos 109

+

La infección del oído es una de las enfermedades más comunes que se encuentran en la práctica médica hoy en todo el mundo, que afecta a personas de todas las edades, desde recién nacidos a los grupos geriátricos (El-Mahmood et al., 2010). La infección del oído es causada principalmente por bacterias (Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus aureus. S. epidermidis. Streptococcus pneumoniae. Escherichia coli. Proteus mirabilis) y hongos patógenos (Aspergillus niger. A. fumigatus, A. flavus. Candida albicans) (Roland y Stroman, 2002 Rosenfeld et al., 2006 Dhingra 2006 Aneja et al., 2010). El aumento de la resistencia entre los microorganismos frente a los agentes antimicrobianos disponibles es de gran preocupación entre los científicos y los médicos de todo el mundo. Para superar la falta de eficacia de los fármacos antimicrobianos actuales y obtener fármacos más eficaces, el impulso es la búsqueda de nuevos fármacos antimicrobianos de planta medicinal s (Cordell 2000 Khalafi-Nezhad et al., 2005 Nebedum et al., 2009 Jana y Shekhawat , 2010). Extracto de plantas s se han utilizado durante siglos como un método popular para el tratamiento de varios trastornos de la salud. plantas indígenas constituyen una rica fuente sin explotar de las plantas medicinales que se utilizan comúnmente para el tratamiento de diversas enfermedades, ya que se considera que tienen ventajas sobre los fármacos utilizados convencionalmente que son caros y sabe que tiene efectos secundarios dañinos (Khare 2004 Tijjani et al . 2009 Arya et al., 2010 Vaghasiya et al. 2011). Por lo tanto, un menor número de efectos secundarios, una mejor compatibilidad y tratamiento sólo está disponible para algunas enfermedades hace que la planta medicinal es un remedio ideal para el tratamiento de las enfermedades (Karim et al. 2011). Berberis aristata DC. (Familia Berberidaceae), comúnmente llamado agracejo indio y Daru haldi, un taxón de Berberis que comprende de alrededor de 450-500 especies. Es un erecta, glabra, espinescentes, arbusto de hoja caduca, de forma nativa pertenece a partes montañosas del norte de la India y Nepal, creciendo hasta una altura de 3-6 m. Hojas de B. aristata son obovadas a elípticas producir flores amarillas dispuestas en racimos colgantes corimbosas. Las frutas son de largo, ovoide, rojo azulado negro o de color brillante y cubierto con una gruesa flor de color blanco pálido o azulado y nacen en racimos péndulos (Khory y Kartak de 1985 Kirtikar y Basu, 1995 Rashmi et al., 2008 Das et al., 2009 ). Tradicionalmente, las hojas y las raíces de B. planta aristata se han utilizado en sistema indígena de la medicina para curar trastornos diferentes. Decocción de las hojas, comúnmente llamado rasaut, se utiliza para tratar enfermedades de la piel, la menorragia, la diarrea, el cólera, la ictericia, la infección del tracto urinario s, ojo e infecciones del oído. La decocción de raíz se utiliza como un lavado para las heridas y úlceras infectadas y ayuda en la curación y promueve la cicatrización. El extracto seco de las raíces se aplican externamente a los párpados para curar la oftalmía y otras enfermedades oculares (Jain y Singh, 1994 Malik et al. 2011). Los otros usos de esta planta son como útil laxante en el reumatismo, antihepatotóxico, anti-inflamatorio y un tónico útil en la curación de las úlceras y fiebres (Gilani y Janbaz, 1992 Gupta et al. 2008). Entre las diversas fitocompuestos de importancia antimicrobiano presente en plantas medicinales, berberina es el principal alcaloide presente en B. aristata. Palmatina, oxiacantina, Beramine, Aromoline, Oxyberberine, Karachine, jatrorrhizina, Taxilamine, 1-O-methylpakistanine, cloruro de Pseudopalmatine y cloruro de Pseodoberberine son los otros alcaloides presentes en esta planta (Chakravati et al. 1950 Blasko y Sharma, 1982 Sharma et al. 2002 Jha, 2004). Por lo tanto, el presente estudio se llevó a cabo para averiguar el potencial antibacteriano y antifúngico de esta planta contra los microorganismos aislados a nivel local de los pacientes que tienen infección de oído y su comparación con gotas para los oídos disponibles localmente. Colección Materiales y métodos de la planta: Las hojas y las raíces de Berberis aristata se obtuvieron de las áreas locales de Mandi (Himachal Pradesh), en marzo de 2010. La identidad taxonómica de esta planta fue confirmada por el Dr. B. D. Vashishta del Departamento de Botánica de la Universidad de Kurukshetra, Kurukshetra. La extracción del material vegetal: El extracto de raíces u hojas de B. aristata se preparó siguiendo la metodología adoptada anteriormente por Aneja y Sharma (2010). microorganismos de prueba: Cinco bacterias a saber, Staphylococcus aureus (HM626197) (Gram-positivas), Acinetobacter sp. (HM626198), Proteus mirabilis (HM626199), Escherchia coli (HM626200), Pseudomonas aeruginosa (HM626201) (Gram-negativas) y una levadura, Candida albicans utilizados en este estudio, fueron aisladas de los pacientes que tienen infección de oído de las clínicas ORL locales de Kurukshetra (Aneja et al., 2010). Las cepas bacterianas fueron identificados sobre la base de la tinción, bioquímicos y las características moleculares (16S rRNA de secuenciación) (Lawongsa et al., 2008) y la levadura sobre la base de la tinción, las características morfológicas y de cultivo (Aneja, 2003 capuchino y Sherman, 2008). Los aislados bacterianos se subcultivaron en agar de nutrientes y la levadura en agar de levadura de malta y se incubaron aeróbicamente a 37ºC. Los medios se obtienen de Hola Laboratorio de Medios Pvt. Ltd. de Bombay, India (la secuencia de nucleótidos de todos los cinco bacterias se han presentado al GenBank base de datos que han proporcionado el número de acceso de GenBank, HM626197-HM626201). Gotas para los oídos: Tres oído comúnmente prescrito cae por otorrinolaringólogo, dos Ciplox alopática (antibacteriano), Franco (antimicótico) y una gota de hierbas oído Bilwa Tel (antimicrobiano), utilizado en este estudio, se adquirieron en el mercado local de Kurukshetra. La detección de la actividad antimicrobiana: La acetona, metanol, etanol, acuosas B. hojas y raíces aristata extractos calientes y frías se utilizaron para la evaluación de la actividad antimicrobiana por el método de difusión en agar bien y concentración mínima inhibitoria (MIC) para cada organismo de ensayo se determinó siguiendo el método de difusión en agar modificado (Adeniyi y Ayepola 2008 Aneja y Sharma, 2010). Análisis estadístico: Los resultados experimentales se repitieron tres veces por triplicado cada vez y se expresa como la prueba t de Medios. El valor de p inferior a 0,01 se consideraron significativos. La actividad antibacteriana de B. hojas aristata y extractos de raíz en las placas de agar varió en diferentes disolventes. Los controles positivos producen zonas de inhibición de tamaño significativamente contra las bacterias ensayadas (que oscilan entre 11,6 y 56,3 mm) y la levadura (con zona de inhibición de 21,3 mm) y el control negativo producido ningún efecto inhibidor observable contra cualquiera de los organismo de ensayo. Entre los tres extractos en disolventes orgánicos de raíz y las hojas, extracto de acetona se ha encontrado zona de máxima que muestra más eficaz de inhibición en comparación con el MIC etanólico y m etanólico extracto de s y la más baja frente a los patógenos bacterianos ensayados. Acuosa deja extractos (fríos y calientes), poseían actividad antibacteriana frente a tres patógenos y extracto de raíz contra de un solo patógeno bacteriano. Raíz y las hojas extracto acuoso no produjo ninguna zona de inhibición contra los hongos patógenos ensayados (Tabla 1. 2). Entre los extractos de raíz de prueba, todos los cinco extractos en disolventes (orgánica y acuosa) mostraron actividad antibacteriana contra S. aureus con mayor zona de inhibición en extracto de acetona (28,3 mm), seguido de m extracto etanólico (26,3 mm), extracto etanólico (24 mm ), caliente (17,6 mm) y los extractos acuosos fríos (15,3 mm). S. aureus se encontró que era el patógeno más sensible que tiene una MIC de 3,12 mg ml -1 en el extracto de raíz de acetona seguido por la metanólico y extracto etanólico s, 6,25 mg ml -1. extractos de raíz orgánicos mostraron una actividad moderada contra P. mirabilis y Acinetobacter sp. con zonas de inhibición que oscila entre 22,6 y 17,6 mm y MIC que varía entre 12,5 y 25 mg ml -1. La actividad antimicrobiana de B. aristata hojas y extracto de raíz, alopática y medicamentos ayurvédicos de patógenos en el oído determinados por el método de difusión en agar así Sa: Staphylococcus aureus. Proteus mirabilis: pm. PA: Pseudomonas aeruginosa. Ec: Escherichia coli. Áspid. Acinetobacter Sp. Ca: Candida albicans Re: Extracto de raíz, Le: extracto de hojas, -: No hay actividad, NT: No se ha probado, un archivo de valores, incluyendo el diámetro del pozo (8 mm), son medios de prueba t de tres replicatess concentración inhibitoria mínima de B . aristata hojas y extracto de raíz de patógenos en el oído determinados por el método de difusión en agar modificado Sa: Staphylococcus aureus. Proteus mirabilis: pm. PA: Pseudomonas aeruginosa. Ec: Escherichia coli. Áspid. Acinetobacter Sp. Ca: Candida albicans Re: Extracto de raíz, LE: extracto de hojas de ND: no determinado Las zonas de inhibición producidos por disolventes orgánicos frente a P. aeruginosa y E. coli fue casi igual y oscilaron entre 18,6 mm y 15,3 mm y estas dos bacterias se encontró que ser menos sensible que tiene una MIC que varía entre 25 y 50 mg ml -1. Sin embargo, C. albicans se encontró que era menos sensible que tiene una MIC de 50 mg ml-1 (Tabla 1. 2). Todos los cinco extractos en disolventes (orgánica y acuosa) de las hojas mostraron actividad antibacteriana contra S. aureus con mayor zona de inhibición en el extracto acuoso caliente (27,6 mm), seguido por el extracto acuoso frío (25,3 mm), extracto de acetona (24,6 mm), m extracto etanólico (20,6 mm) y el extracto etanólico (18,4 mm). S. aureus fue nuevamente se encontró que el patógeno más sensibles, por lo tanto tener una CIM de 3,12 mg ml -1 extracto acuoso en caliente seguido por el extracto acuoso y acetona fría (6,25 mg ml -1), m extracto etanólico (12,5 mg ml -1) y el extracto etanólico (25 mg ml -1). Las zonas de inhibición producida por los cinco disolventes contra Acinetobacter sp. osciló entre 22,3 mm y 16,3 mm. Acinetobacter sp. era relativamente menos sensible, lo que tiene un MIC que varía entre 12,5 y 50 mg ml -1. La zona de inhibición producido por el disolvente orgánico deja extractos contra P. mirabilis. P. aeruginosa y C. albicans eran casi iguales y oscilaron entre 19,3 y 15 mm. P. mirabilis mostraron una MIC de 25 mg ml -1 contra todos los extractos orgánicos probados mientras que P. aeruginosa mostró una MIC de 25 mg ml -1 (acetona y metanol) y 50 mg ml -1 (etanol), mientras que C. albicans mostraron una MIC de 25 mg ml -1 (acetona) y 50 mg ml -1 (metanol y etanol), respectivamente (Tabla 1. 2). Bilwa gota tel oído demostró la inhibición de los dos patógenos bacterianos, S. aureus, E. coli con la zona de inhibición que oscila entre 13 mm y 11 mm, pero alopática antibacteriano ciplox gotas para los oídos, que contiene ciprofloxacino y gotas para los oídos antifúngico, sincero, que contiene clotrimazol, zona producida de la inhibición que oscila entre 56 mm y 21 mm. mostraron una mayor actividad inhibidora frente a los patógenos del oído que los extractos de raíz y hoja probadas de B. aristata. Todos los resultados obtenidos son estadísticamente significativas, ya que mostraron (P0.01) en comparación con el control (Tabla 1). Hoy en día, hay un renovado interés en la medicina tradicional y una creciente demanda de más medicamentos de origen vegetal. Este renacimiento del interés en las drogas de origen vegetal se debe principalmente a la creencia generalizada de corriente que la medicina verde es seguro y más confiable que los costosos medicamentos sintéticos, muchos de los cuales tienen efectos secundarios adversos (Nair y Chanda, 2007 Agbafor et al. 2011) . Por lo tanto, en la presente investigación se evaluaron diferentes extractos orgánicos (etanol, metanol, acetona) y acuoso (caliente y frío) de B. aristata por su potencial antibacteriana y antifúngica para la primera vez contra los patógenos causantes de infección de oído. Etnobotánica, B. aristata se ha usado contra una amplia gama de dolencias (Shahid et al. 2009) actividades. Variable de diferentes partes de la planta (raíz, tallo, fruta) de esta planta se han reportado contra diferentes patógenos humanos de bacterias y hongos en diferentes disolventes (Singh et al. 2007 Malik et al. 2010). La mayoría de los efectos antimicrobianos descritos de extractos de B. aristata se han atribuido a sus metabolitos secundarios, en particular los compuestos alcaloides (Singh et al. 2010). En este estudio, se encontró que los extractos de raíz orgánicos de B. aristata a ser el más activo en la inhibición del crecimiento de todos los seis agentes patógenos del oído microbianas ensayadas. Sin embargo, se encontró que el extracto acuoso caliente de B. hojas aristata ser el mejor en la inhibición del crecimiento de bacterias Gram positivas, mientras que los extractos de hojas orgánicas se encontró que era más eficaz contra las bacterias Gram negativas y levaduras probado. La actividad antimicrobiana de extractos de B. aristata contra los patógenos del oído ensayados puede ser debido a la presencia de metabolitos secundarios, principalmente, berberina, un alcaloide de isoquinolina, con un color amarillo brillante. También se encontró berberina para inhibir la respuesta secretora intestinal de Vibrio cholerae y Escherichia coli enterotoxinas sin causar daño histológico a la mucosa intestinal. La berberina también es activo frente a otras infecciones intestinales que causan diarrea aguda como Shigella dysenteriae, Salmonella paratyphi y varias especies de Klebsiella. sulfato de berberina se ha demostrado que bloquean la adherencia de Streptococcus Pyrogenes y E. coli a las células huésped, lo que puede explicar su mecanismo de acción contra numerosos patógenos (Sack y Froehlich, 1982 Sun et al., 1988 Naika y Krishna, 2008). De los seis extractos orgánicos de dos partes de estas plantas examinadas, el extracto de acetona se ha encontrado para ser más activos y tienen una mejor actividad antimicrobiana que (tabla 1).Estas resultados El extracto etanólico s y m etanólico correspondiente confirman el hallazgo realizado por Eloff, (1998). Cowan (1999) y Nair et al. (2005). que había puntuación acetona como el mejor disolvente. Curiosamente, se encontró que los extractos de B. aristata ser más potente contra los patógenos del oído probados en comparación con la caída estándar a base de hierbas oído (Bilwa tel) que muestra un gran potencial para ser desarrollado como una caída de la oreja a base de hierbas para el control de las infecciones del oído microbianas. En conclusión, este estudio ha demostrado que los extractos acetónico de B. aristata mostraron actividad antimicrobiana prometedora contra todos los patógenos en el oído bacterianas y fúngicas ensayadas. Este resultado se presta credibilidad a la utilización folklórica de la planta B. aristata en el tratamiento de infecciones del oído y demuestra que B. aristata podría ser explotado para los nuevos agentes antimicrobianos potentes. Sin embargo, se necesitan más experimentos que incluyen el análisis químico fito para identificar los principios activos responsables de la actividad antimicrobiana observada y en estudios in vivo en esta planta para determinar su toxicidad y sus propiedades farmacocinéticas, de utilidad terapéutica en el tratamiento de las infecciones del oído. Los autores agradecen al Dr. B. D. Vashishta, Departamento de Botánica de la Universidad de Kurukshetra, Kurukshetra, por desgarrador ayuda en la confirmación de la identificación de la planta y de la Universidad de Kurukshetra, Kurukshetra para la asistencia financiera. Adeniyi, B. A. y O. Ö. Ayepola, 2008. detección Thephytochemical y la actividad antimicrobiana de extractos de hojas de Eucalyptus camaldulensis y Eucalyptus torelliana (Myrataceae). Res. J. Med. Planta, 2: 34-38. Agbafor, K. N. E. I. Akubugwo, M. E. Ogbashi, P. M. Ajah y C. C. Ukwandu de 2011. Las propiedades químicas y antimicrobianas de extractos de hojas de Zapoteca portoricensis. Res. J. Med. Planta, 5: 605-612. CrossRef Aneja, K. R. y C. Sharma, 2010. potencial antimicrobiana de extractos de frutas de elettaria maton cardamomum (Chhoti: Elaichi) contra los patógenos causantes de infección en el oído. Pharmacologyonline, 3: 750-756. Enlace directo Aneja, K. R. 2003. Los experimentos en microbiología, patología de plantas y biotecnología. 4th Edn. New Age International (P) Ltd. India, ISBN-13: 9788122414943, Páginas: 632. Aneja, K. R. C. y R. Sharma Joshi, 2010. La infección fúngica de la oreja: Un problema común en la parte noreste de Haryana. Int. J. Ped. Otorhinolaryngol. 74: 604-607. CrossRef PubMed Arya, S. V. Yadav, S. Kumar Yadav y J. P., 2010. La actividad antimicrobiana de Cassia occidentalis L (hoja) frente a diversos microbios patógenos humanos. Life Sci. Medicina. Res. 2010: 1-11. Enlace Directo Blasko, G. y M. Sharma, 1982. Taxilamine: Un alcaloide pseudobenzylpyro quinolina. Heterocycles, 19: 257-259. Cappuccino, J. G. y N. Sherman, 2008. Microbiología: A Laboratory Manual. 7 de Edn. Benjamin Cummings Publishing Company, EE. UU.. ISBN-13: 9788131714379. Chakravati, K. K. DC Dhar y S. Siddiqui, 1950. Los constituyentes alcaloides de la corteza de Berberis aristata. J. Sci. Ind. Res. 9: 161-164. Cordell, G. A. 2000. La biodiversidad y el descubrimiento de fármacos-Una relación simbiótica. Fitoquímica, 55: 463-480. CrossRef Cowan, M. M. 1999. Productos de origen vegetal como agentes antimicrobianos. Clin. Microbiol. Rev. 12: 564-582. PubMed Enlace Directo Das, S. M. K. Das, P. M. Mazumder, S. Das y S. P. Basu, la actividad de 2009. La citotoxicidad del extracto metanólico de Berberis aristata DC, el cáncer de colon. Global J. Pharmacol. 3: 137-140. Dhingra, P. L. 2006. Las enfermedades del oído, nariz y garganta con Web Access. 4th Edn. Reed Elsevier India Private Limited, Nueva Delhi, ISBN-13: 9788131203279. El-Mahmood, A. M. TRANSMISIÓN EXTERIOR. Ogbonna y M. Raji, 2010. La actividad antibacteriana de Azadarichta indica (neem) extractos de semillas contra patógenos bacterianos asociados con infecciones de ojos y oídos. J. Med. Plantas Res. 14: 1414-1421. Eloff, J. N. 1998. Qué extractante se debe utilizar para la detección y el aislamiento de los componentes antimicrobianos de las plantas J. Ethnopharmacol. 60: 1-8. CrossRef Enlace Directo Gilani, A. H. y K. H. Janbaz, 1992. Prevención de la inducida por paracetamol daño hepático por las hojas Berberis aristata. Biochem. Soc. Trans. 20: 347S-347S. CrossRef PubMed Enlace Directo Gupta, S. K. R. Agarwal, S. Srivastava, P. Agarwal, S. S. Agrawal, V. Saxena y X. Galpalli, 2008. Los efectos antiinflamatorios de Curcuma longa y Berberis aristata en uveítis inducida por endotoxina en conejos. Invertir. Ophthalmol. Visual Sci. 49: 4.036 a 4.040. CrossRef PubMed Jain, S. P. y C. S. Singh, 1994. Etno médico-estudio botánico, Ambikapur Distrito, MP. Actas del 4º Congreso Internacional de Etnobiología, NBRI, Lucknow, UP, India. Jana, S. y G. S. Shekhawat, 2010. El análisis fitoquímico y la detección de anti-bacteriano in vivo e in vitro de extractos de hierbas medicinales de la India: Anethum graveolens. Res. J. Med. Planta, 4: 206-212. CrossRef Enlace Directo Jha, N. K. 2004. Berberis aristata. Daruharidra: agracejo indio. Phytopharm, 5: 3-11. Karim, A. M. N. Sohail, S. y S. Munir Sattar, 2011. Farmacología y fitoquímica de hierbas paquistaníes y los medicamentos a base de hierbas utilizados para el tratamiento de la diabetes. Int. J. Pharmacol. 7: 419-439. CrossRef Khalafi-Nezhad, A. M. N.S. Rad, H. Mohabatkar, Z. Asrari y B. Hemmateenejad, 2005. Diseño, síntesis, antibacterianos y QSAR estudios de derivados de bencimidazol y chloroaryloxyalkyl imidazol. Bioorg. Medicina. Chem. 13: 1931-1938. CrossRef PubMed Khare, C. P. 2004. Enciclopedia de las plantas medicinales de la India Occidental: Terapia Racional, el uso tradicional ayurvédica y Otros, Botánica. Segundo Edn. Springer VERLAY, Nueva Delhi, ISBN-13: 9783540200338. Khory, RN y N. N. Kartak, 1985. Materia Médica de la India y su terapéutica. Neeraj Publications, New Delhi, India, pp: 32-34. Kirtikar, K. R. y B. D. Basu, 1995. Las plantas medicinales de la India. Vol. 1, Libro de Distribuidores internacionales, Dehradun, India, pp: 371-372. Lawongsa, P. N. Boonkerd, S. Wongkaew, F. y N. Ogara Teaumroong, 2008. Caracterización molecular y fenotípica del potencial de crecimiento de la promoción de Pseudomonas arroz y maíz rizosfera de la planta. Mundial J. Microbiol. Biotechnol. 24: 1877-1884. CrossRef Malik, A. R. M. A.A. Siddique, P. A. Sofi y J. S. Butola, 2011. Ethnomedicinal prácticas y estado de conservación de las plantas medicinales del Norte Cachemira Himalaya. Res. J. Med. Plant, 5: 515-530. CrossRef Malik, F. T. Mirza, H. Riaz, A. y S. Hameed Hussain, 2010. vigilancia biológica de diecisiete plantas medicinales utilizadas en los sistemas de medicina tradicional en Pakistán para actividades antimicrobianas. Afr. J. Pharm. Pharmacol. 4: 335-340. Enlace Directo Naika, H. R. y V. Krishna, 2008. La micropropagación, el aislamiento y la caracterización de la berberina partir de hojas de naravelia zeylanica (L.) DC. Res. J. Medicinal Plant, 2: 1-9. CrossRef Enlace Directo Nair, R. y S. Chanda, 2007. actividades antibacterianas de algunas plantas medicinales de la región occidental de la India. Turco. J. Biol. 31: 231-236. Enlace directo Nair, R. T. y S. Kalariya Chanda, 2005. La actividad antibacteriana de algunos flora medicinal indios seleccionados. Turco. J. Biol. 29: 41-47. Enlace directo Nebedum, J. K. Ajeigbe, E. Nwobodo, C. y O. Uba Adesanya, 2009. Estudio comparativo del extracto etanólico de cuatro plantas nigerianos contra algunos microorganismos patógenos. Res. J. Med. Planta, 3: 23-28. Enlace Directo Rashmi, A. y J. Rajasekaran Pant, 2008. El género Berberis Linn. Una revisión. Rev. Plant 2: 369-385. Enlace directo Roland, P. S. y D. W. Stroman, 2002. Microbiología de aguda La otitis externa. Larygoscope, 112: 1166-1177. CrossRef PubMed Rosenfeld, R. M. L. Brown, R. C. Cannon, J. R. y G. T. Dolor Ganiats et al. 2006. Guía de práctica clínica: la otitis externa aguda. Otolaryngol. Cabeza y Cuello Sur. 134: S4-S23. PubMed Saco, R. B. y J. L. Froehlich, 1982. La berberina inhibe la respuesta secretora intestinal de Vibrio cholerae y Escherichia coli enterotoxinas. Infectar. Inmunidad, 35: 471-475. Enlace Directo Shahid, M. T. Rahim, A. Shahzad, Tajuddin y A. Latif et al. 2009. Los estudios etnobotánicos en Berberis aristata DC. extractos de raíz. Afr. J. Biotechnol. 4: 556-563. Enlace directo Sharma, P. C. MEGABYTE. Yelne y T. J. Dennis, 2002. Base de datos sobre plantas medicinales utilizadas en Ayurveda. Vol. 1. Consejo Central para la Investigación de Ayurveda y Siddha, Nueva Delhi, pp: 120-122. Singh, S. A. Duggal, N. J. Singh Kaur y 2010. La berberina: Alcaloide con amplio espectro de actividades farmacológicas. J. Nat. Pinchar. 3: 64-75. Enlace directo Singh, S. M. Srivastava y A. K.S. Rawat, 2007. Las actividades antimicrobianas de las especies de Berberis indias. Fitoterapia, 78: 574-576. CrossRef PubMed Sol, D. H. S. Courtney y H. H. Beachey, 1988. La berberina bloques de sulfato de adherencia de Streptococcus pyogenes a las células epiteliales, la fibronectina y hexadecano. Antimicrob. Agents Chemother. 32: 1370-1374. PubMed Enlace Directo Tijjani, M. B. I A. Bello, A. B. Aliyu, T. Olurishe, S. M. Maidawa, J. D. Habila y E. O. Balogun, 2009. fitoquímico y los estudios antibacterianas del extracto de raíz de Cochlospermum tinctorium A. rica. (Cochlospermaceae). Res. J. Med. Planta, 3: 16-22. CrossRef Enlace Directo Vaghasiya, Y. R. Dave y S. Chanda, 2011. El análisis fitoquímico de algunas plantas medicinales de la región occidental de la India. Res. J. Med. Planta, 5: 567-576. CrossRef